Нарушения в составе кишечной микробиоты (дисбиоз) могут способствовать развитию ожирения, поскольку они негативно влияют на эффективность усвоения энергии и метаболические процессы в организме. Одним из перспективных терапевтических направлений в контексте улучшения кишечного гомеостаза является применение пробиотических добавок. Настоящее исследование было направлено на комплексную оценку влияния пробиотического штамма Streptococcus salivarius на кишечник добровольцев с ожирением. С помощью высокопроизводительного секвенирования на базе платформы DNBSEQ-G50 были получены микробиомные профили добровольцев до и после приема пробиотической добавки, содержащей бактериальный вид S. salivarius. Был проведен анализ альфа-разнообразия, используя меры разнообразия наблюдаемых видов и индекс Шеннона. Статистически значимых различий не выявлено. Анализ бета-разнообразия показал наличие кластеризации между исследуемыми группами, однако, статистически достоверных различий не обнаружено. Дифференциальный анализ численности выявил статистически значимые различия на видовом уровне между микробиомом добровольцев до и после приема пищевой добавки. У добровольцев после приема добавки наблюдалось снижение содержания видов: Phocaeicola vulgatus (8,469% ± 2,884 против 3,460% ± 0,864, p=0,013), Yeguia hominis (0,017% ± 0,005 против 0,007% ± 0,004, p=0,017). Напротив, относительная обильность таксона GGB2970 SGB3952 (Firmicutes) увеличивалась на фоне приема пробиотической добавки относительно данных полученных изначально до добавки (0,043% ± 0,012 против 0,087% ± 0,009, p= 0,001). Снижение относительной представленности Phocaeicola vulgatus и Yeguia hominis при увеличении GGB2970 SGB3952 указывает на направленное изменение таксономического профиля микробиоты. Направление сдвигов можно охарактеризовать как потенциально благоприятное. Однако физиологическая значимость этих изменений требует дальнейшего изучения, включая анализ функционального потенциала микробиоты и ассоциаций с клиническими параметрами.

1. Luqman A., Hassan A., Ullah M., Naseem S. et al. Role of the intestinal microbiome and its therapeutic intervention in cardiovascular disorder // Frontiers in immunology. 2024. V. 15. P. 1321395. doi: 10.3389/fimmu.2024.1321395.

2. Petersen C., Round J. L. Defining dysbiosis and its influence on host immunity and disease // Cellular microbiology. 2014. V. 16. № 7. P. 1024–1033. doi: 10.1111/cmi.12308.

3. Parkin K., Christophersen C.T., Verhasselt V., Cooper M.N. et al. Risk factors for gut dysbiosis in early life // Microorganisms. 2021. V. 9. № 10. P. 2066. Doi: 10.3390/microorganisms9102066.

4. Ma M., Su J., Wang Y., Wang L., et al. Association of body mass index and intestinal (faecal) Streptococcus in adults in Xining city, China P.R // Beneficial microbes. 2022. V. 13. № 6. P. 465–471. doi: 10.3920/BM2021.0046.

5. Gu M., Ge J., Pan Q., Hu N., Hua F. Salivary microbiome variations in type 2 diabetes mellitus patients with different stages of periodontitis // BMC oral health. 2024.V. 24. № 1.P. 1424. doi: 10.1186/s12903-024-05135-3.

6. Letchumanan G., Abdullah N., Marlini M., Baharom N. et al. Gut Microbiota Composition in Prediabetes and Newly Diagnosed Type 2 Diabetes: A Systematic Review of Observational Studies // Frontiers in cellular and infection microbiology. 2022.V. 12. P. 943427. doi: 10.3389/fcimb.2022.943427.

7. Ren Y., Hao L., Liu J., Wang P. et al. Alterations in the Gut Microbiota in Pregnant Women with Pregestational Type 2 Diabetes Mellitus // mSystems. 2023.V. 8. № 2. P. e0114622. doi: 10.1128/msystems.01146-22.

8. Yang Z., Zhang F., Li H., Liu B. et al. Gut commensal Phocaeicola vulgatus AF107-22 alleviates obesity-induced metabolic syndrome via promoting gut microbiota-derived spermidine synthesis // Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2026. V. 74. № 7. P. 6218–6229. doi: 10.1021/acs.jafc.5c14443.

9. Zhao Y, Li Z and Yu G. Impact of probiotics and prebiotics on glucose/lipid metabolism in metabolic dysfunction-associated steatotic liver disease: mechanisms and implications // Front. Nutr. 2026. V. 13. P. 1779954. doi: 10.3389/fnut.2026.1779954.

10. Jin S., Chen P., Yang J., Li D. et al. Phocaeicola vulgatus alleviates diet-induced metabolic dysfunction-associated steatotic liver disease progression by downregulating histone acetylation level via 3-HPAA // Gut microbes. 2024.V. 16. № 1. P. 2309683. doi: 10.1080/19490976.2024.2309683.

11. Mills R.H., Dulai P.S., Vázquez-Baeza Y., Sauceda C. et al. Multi-omics analyses of the ulcerative colitis gut microbiome link Bacteroides vulgatus proteases with disease severity // Nature Microbiology. 2022. V. 7. № 2. P. 262–276. doi: 10.1038/s41564-021-01050-3.

12. Caminero A., Guzman M., Libertucci J., Lomax A.E. The emerging roles of bacterial proteases in intestinal diseases // Gut Microbes. 2023. V. 15. № 1. P. 2181922. doi: 10.1080/19490976.2023.2181922.

13. Liu C., Du M.X., Abuduaini R., Yu H.Y. et al. Enlightening the taxonomy darkness of human gut microbiomes with a cultured biobank // Microbiome. 2021.V. 9. № 1. P. 119. doi: 10.1186/s40168-021-01064-3.

14. Riva A., Borgo F., Lassandro C., Verduci E. et al. Pediatric obesity is associated with an altered gut microbiota and discordant shifts in Firmicutes populations // Environmental Microbiology. 2017. V. 19. № 1. P. 95–105. doi: 10.1111/1462-2920.13463.

15. Cui Y., Jia Q., Yan H., Hua X. et al. Novel Enterococcus faecium P2 as a probiotic for mitigating Clostridioides difficile infection // Microbial Pathogenesis. 2025. V. 208. P. 108028. doi: 10.1016/j.micpath.2025.108028.

16. De Bandt J.P., Waligora-Dupriet A.J., Butel M.J. Intestinal microbiota in inflammation and insulin resistance: relevance to humans // Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic Care. 2011. V. 14. № 4. P. 334–40. doi: 10.1097/MCO.0b013e328347924a.

17. Stojanov S., Berlec A., Štrukelj B. The influence of probiotics on the Firmicutes/Bacteroidetes ratio in the treatment of obesity and inflammatory bowel disease // Microorganisms. 2020. V. 8. № 11. P. 1715. doi: 10.3390/microorganisms8111715.

18. Liang Y., Liu D., Zhan J., Luo M. et al. New insight into the mechanism of POP-induced obesity: Evidence from DDE-altered microbiota // Chemosphere. 2020. V. 244. P. 125123. doi: 10.1016/j.chemosphere.2019.125123.

19. Magne F., Gotteland M., Gauthier L., Zazueta A. et al. The Firmicutes/Bacteroidetes Ratio: A Relevant Marker of Gut Dysbiosis in Obese Patients? // Nutrients. 2020.V. 12. № 5. P 1474. doi: 10.3390/nu12051474.

20. de Wit N., Derrien M., Bosch-Vermeulen H., Oosterink E. et al. Saturated fat stimulates obesity and hepatic steatosis and affects gut microbiota composition by an enhanced overflow of dietary fat to the distal intestine // American journal of physiology. Gastrointestinal and liver physiology. 2012. V. 303. № 5. P. G589-99. doi: 10.1152/ajpgi.00488.2011.